CV Andreas Müller

 

Andreas Müller studierte Biologie an der ETH Zürich und promovierte in der Arbeitsgruppe von Wolf-Dietrich Hardt zum Thema der Inflammasomaktivierung durch Salmonella-Effektorproteine, und zur Untersuchung der Bakterieninvasion mittels intravitaler Mikroskopie im lebenden Gewebe. Zwischen 2010 und 2013 forschte Andreas Müller als Postdoktorand am Institut Pasteur in Paris im Labor von Philippe Bousso zur Dynamik von T-Zell-Effektorfuktionen bei der Infektion mit Leishmania major, und spezialisierte sich auf die Anwendung von Biosensoren für die Messung der Pathogenphysiologie mittels intravitaler 2-Photonenmikroskopie.

Nach einem kurzen Forschungsaufenthalt an der Universität Lausanne in der Arbeitsgruppe von Fabienne Tacchini-Cottier zum Thema der Neutrophileninteraktion mit Leishmania wurde er auf die gemeinsam am Institut für Molekulare und Klinische Immunologie der Otto-von-Guericke-Universität Magdeburg und am Helmholtz Zentrum für Infektionsforschung Braunschweig angesiedelte W2-Professur „Intravitalmikroskopie von Infektion und Immunität“ berufen. Neben der Rolle der Pathogenproliferation für die Immunzellinteraktion mit Leishmania major beschäftigt er sich hier mit der Rolle von Neutrophilen bei der Infektion mit Staphylococcus aureus. Seit 2021 ist Andreas Müller Leiter der am Institut für Molekulare und Klinische Immunologie angegliederten Abteilung „Experimentelle Immundynamik“.

Innerhalb des Schwerpunktprogramms wird seine Arbeitsgruppe in Zusammenarbeit mit der Arbeitsgruppe von Ger van Zandbergen den Zusammenhang zwischen dem Auslösen von Zelltod, Pathogenwachstum, und dem Austritt von L. major aus der infizierten Zelle untersuchen.

Ausgewählte Publikationen:

  1. Dudeck J, Kotrba J, Immler R, Hoffmann A, Voss M, Ismini Alexaki V, Morton L, Jahn SR, Katsoulis-Dimitriou K, Winzer S, Kollias G, Fischer T, Nedospasov SA, Dunay IR, Chavakis T, Müller AJ, Schraven B, Sperandio M, and Dudeck A (2021) Directional mast cell degranulation of TNF into blood vessels primes neutrophil extravasation. Immunity 54:468-483.e5.
  2. Seiß EA, Krone A, Formaglio P, Goldmann O, Engelmann S, Schraven B, Medina E, Müller AJ (2019) Longitudinal proliferation mapping in vivo reveals NADPH oxidase-mediated dampening of Staphylococcus aureus growth rates within neutrophils. Sci Rep 9:5703.
  3. Heyde S, Philipsen L, Formaglio P, Fu Y, Baars I, Höbbel G, Kleinholz C, Seiß EA, Stettin J, Gintschel P, Dudeck A, Bousso P, Schraven B, Müller AJ (2018) CD11c-expressing Ly6C+CCR2+ monocytes constitute a reservoir for efficient Leishmania proliferation and cell-to-cell transmission. PLoS Pathog 14:e1007374.
  4. Glodde N, Bald T, Boorn-Konijnenberg D, Nakamura K, Szczepanski S, Brandes M, Eickhoff S, Shridhar N, Hinze D, Rogava M, van der Sluis T, Ruotsalainen J, Gaffal G, Landsberg J, Ludwig K, Wilhelm C, Riek-Burchardt M, Müller AJ, Gebhardt C, Janzen V, Kastenmüller W, Smyth M, Mazzone M, Tüting T, Hölzel M (2017) Reactive Neutrophil Responses Dependent on the Receptor Tyrosine Kinase c-MET Limit Cancer Immunotherapy. Immunity 47:789-802.
  5. Philipsen L, Reddycherla AV, Hartig R, Gumz J, Kastle M, Kritikos A, Poltorak MP, Prokazov Y, Turbin E, Weber A, Zuschratter W, Schraven B, Simeoni L, Müller AJ (2017) De novo phosphorylation and conformational opening of the tyrosine kinase Lck act in concert to initiate T cell receptor signaling. Sci Signal 10:eaaf4736.
  6. Olekhnovitch R, Ryffel B, Müller AJ*, Bousso P (2014) Collective nitric oxide production provides tissue-wide immunity during Leishmania infection. J Clin Invest 124:1711-1722.
  7. Müller AJ*, Aeschlimann S, Olekhnovitch R, Dacher M, Spath GF, Bousso P (2013) Photoconvertible Pathogen Labeling Reveals Nitric Oxide Control of Leishmania major Infection In Vivo via Dampening of Parasite Metabolism. Cell Host Microbe 14:460-467.
  8. Müller AJ*, Filipe-Santos O, Eberl G, Aebischer T, Spath GF, Bousso P (2012) CD4(+) T Cells Rely on a Cytokine Gradient to Control Intracellular Pathogens beyond Sites of Antigen Presentation. Immunity 37: 147-157
  9. Müller AJ, Kaiser P, Dittmar KE, Weber TC, Haueter S, Endt K, Songhet P, Zellweger C, Kremer M, Fehling HJ, Hardt WD (2012) Salmonella gut invasion involves TTSS-2-dependent epithelial traversal, basolateral exit, and uptake by epithelium-sampling lamina propria phagocytes. Cell Host Microbe 11:19-32.
  10. Müller AJ, Hoffmann C, Galle M, Van Den Broeke A, Heikenwalder M, Falter L, Misselwitz B, Kremer M, Beyaert R, Hardt WD (2009) The S. Typhimurium effector SopE induces caspase-1 activation in stromal cells to initiate gut inflammation. Cell Host Microbe 6:125-136.